C型肝炎病毒非結構蛋白質NS5A連續磷酸化的機制

Abstract

C型肝炎病毒非結構蛋白NS5A被認為會透過連續磷酸化調控位於第一低複雜度序列 (low complexity sequence I) 區域中的絲氨酸群，使其在兩種磷酸化狀態，低度磷酸化與高度磷酸化間進行轉換。然而，這個論述缺乏直接證據。我首先利用專一性抗體測量於先前的磷酸化蛋白質體研究中發現的磷酸化位點絲氨酸222、235，及238的磷酸化。在被第二型C型肝炎病毒J6/JFH1所感染的人類肝腫瘤細胞株中，絲氨酸222的磷酸化幾乎不能被偵測到，然而絲氨酸235及238的磷酸化總是被偵測到，並且隨著感染時間平行發展，於細胞內部的空間分布上也總是高度重疊。絲氨酸235的丙氨酸變異 (S235A) 排除了絲氨酸238的磷酸化，然而絲氨酸238的丙氨酸變異 (S238A) 並不影響絲氨酸235的磷酸化，表示絲氨酸235的磷酸化可以獨立於絲氨酸238的磷酸化而發生，但絲氨酸238的磷酸化則依附於絲氨酸235的磷酸化。與此相同的是，當以免疫沉澱法配合免疫轉漬進行解析，發現帶有絲氨酸235磷酸化的分子可以不需要絲氨酸238的磷酸化而存在，但絲氨酸238的磷酸化只存在於具有絲氨酸235鄰酸化的NS5A分子中。S235A此變異型會導致病毒的複製無法進行，但S238A此變異型並不會影響病毒的複製，表示絲氨酸235的磷酸化是主要的NS5A磷酸化，用以負責病毒的複製。更重要的是，在非結構蛋白NS3至NS5A聚合蛋白表現載體 (NS3-NS5A expression construct) 所轉染 (transfection) 的人類胚胎腎臟細胞株HEK293T中，我發現只有當絲氨酸232變異為丙氨酸時 (S232A) 可以完全排除NS5A的高度磷酸化，表示絲氨酸232被用來啟動NS5A的高度磷酸化。與此一致的是，S232A排除了包含絲氨酸235及238磷酸化在內的高度磷酸化。有趣的是，絲氨酸232、235，及238所座落的位置，其序列恰好是第一型酪蛋白激酶 (casein kinase I ɑ) 的磷酸化偏好序列 (pS/pTXXS)。降低第一型酪蛋白激酶的表現量會同時降低絲氨酸235及238的磷酸化程度，但不會影響絲氨酸232的磷酸化。我的結論是，絲氨酸232的磷酸化會透過第一型酪蛋白激酶進行連續磷酸化調控絲氨酸235及238的磷酸化，並因此而造成高度磷酸化的出現。

Hepatitis C virus NS5A protein is thought to switch between hypo- and hyper-phosphorylation states via sequential phosphorylation among a series of serine residues in the low complexity sequence I region; however direct evidence is missing. I used specific antibodies to measure NS5A phosphorylation at S222, S235, and S238 that were identified in our previous proteomics study. In the HCV (J6/JFH-1)-infected Huh7.5.1 cells, S222 phosphorylation was barely detected whereas S235 and S238 phosphorylation were always detected in parallel in time and intracellular spaces. S235A mutation eliminated S238 phosphorylation whereas S238A mutation did not affect S235 phosphorylation, indicating that S235 phosphorylation occurs independently of S238 phosphorylation while S238 phosphorylation depends on S235 phosphorylation. In line with this, immunoprecipitation coupled with immunoblotting showed that S235 phosphorylation existed alone without S238 phosphorylation whereas S238 phosphorylation existed only when S235 was phosphorylated on the same NS5A molecules. S235A blunted viral replication whereas S238A did not affect replication. S235 phosphorylation is the primary NS5A phosphorylation required for replication. Furthermore, I found that only at S232A mutation eliminated NS5A hyper-phosphorylation in NS3-NS5A vector-transfected HEK293T cells, indicating that S232 initiates NS5A hyper-phosphorylation. Consistently, S232A eliminated NS5A hyper-phosphorylation at S235 and S238. Intriguingly, S232, S235, and S238 located on the sequence consistent with the phosphorylation preference of casein kinase I ɑ (pS/pTXXS). Casein kinase I α knockdown reduced NS5A phosphorylation at S235 and S238 without affecting S232 phosphorylation. I conclude that S232 phosphorylation primes sequential NS5A phosphorylation at S235 and S238 by casein kinase I α.