Skip navigation

DSpace

機構典藏 DSpace 系統致力於保存各式數位資料(如:文字、圖片、PDF)並使其易於取用。

點此認識 DSpace
DSpace logo
English
中文
  • 瀏覽論文
    • 校院系所
    • 出版年
    • 作者
    • 標題
    • 關鍵字
  • 搜尋 TDR
  • 授權 Q&A
    • 我的頁面
    • 接受 E-mail 通知
    • 編輯個人資料
  1. NTU Theses and Dissertations Repository
  2. 生命科學院
  3. 植物科學研究所
請用此 Handle URI 來引用此文件: http://tdr.lib.ntu.edu.tw/jspui/handle/123456789/65691
完整後設資料紀錄
DC 欄位值語言
dc.contributor.advisor謝旭亮
dc.contributor.authorYang-Tsung Linen
dc.contributor.author林揚宗zh_TW
dc.date.accessioned2021-06-16T23:59:22Z-
dc.date.available2012-07-20
dc.date.copyright2012-07-20
dc.date.issued2012
dc.date.submitted2012-07-16
dc.identifier.citationREFERENCES
Atkinson, H., and Babbitt, P. (2009). Glutathione transferases are structural and functional outliers in the thioredoxin fold. Biochemistry 48, 11108-11124.
Vanholme, B., Grunewald, W., Bateman, A., Kohchi, T., and Gheysen, G. (2007). The tify family previously known as ZIM. Trends in Plant Science 12, 239-44.
Bae, G., and Choi, G. (2008). Decoding of light signals by plant phytochromes and their interacting proteins. Annual Review of Plant Biology 59, 281-592.
Bai, C., Sen, P., Hofmann, K., Ma, L., Goebl, M., Harper, J., and Elledge, S. (1996). SKP1 connects cell cycle regulators to the ubiquitin proteolysis machinery through a novel motif, the F-box. Cell 86, 263-337.
Balbi, V., and Devoto, A. (2008). Jasmonate signalling network in Arabidopsis thaliana: crucial regulatory nodes and new physiological scenarios. The New phytologist 177, 301-319.
Ballesteros, M., Bolle, C., Lois, L., Moore, J., Vielle-Calzada, J., Grossniklaus, U., and Chua, N. (2001). LAF1, a MYB transcription activator for phytochrome A signaling. Genes & Development 15, 2613-2638.
Birkett, M., Campbell, C., Chamberlain, K., Guerrieri, E., Hick, A., Martin, J., Matthes, M., Napier, J., Pettersson, J., Pickett, J., Poppy, G., Pow, E., Pye, B., Smart, L., Wadhams, G., Wadhams, L., and Woodcock, C. (2000). New roles for cis-jasmone as an insect semiochemical and in plant defense. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 97, 9329-9363.
Bolle, C., Koncz, C., and Chua, N. (2000). PAT1, a new member of the GRAS family, is involved in phytochrome A signal transduction. Genes & Development 14, 1269-1347.
Chen, I.C., Huang, I.C., Liu, M.J., Wang, Z.G., Chung, S.S., and Hsieh, H. L. (2007). Glutathione S-transferase interacting with far-red insensitive 219 is involved in phytochrome A-mediated signaling in Arabidopsis. Plant Physiology 143, 1189-1391.
Davoine, C., Falletti, O., Douki, T., Iacazio, G., Ennar, N., Montillet, J. L., and Triantaphylidès, C. (2006). Adducts of oxylipin electrophiles to glutathione reflect a 13 specificity of the downstream lipoxygenase pathway in the tobacco hypersensitive response. Plant Physiology 140, 1484-1577.
Deng, X., Matsui, M., Wei, N., Wagner, D., Chu, A., Feldmann, K., and Quail, P. (1992). COP1, an Arabidopsis regulatory gene, encodes a protein with both a zinc-binding motif and a G beta homologous domain. Cell 71, 791-1592.
Desnos, T., Puente, P., Whitelam, G., and Harberd, N. (2001). FHY1: a phytochrome A-specific signal transducer. Genes & Development 15, 2980-3070.
Devoto, A., and Turner, J. (2003). Regulation of jasmonate-mediated plant responses in arabidopsis. Annals of Botany 92, 329-366.
Devoto, A., Nieto-Rostro, M., Xie, D., Ellis, C., Harmston, R., Patrick, E., Davis, J., Sherratt, L., Coleman, M., and Turner, J. (2002). COI1 links jasmonate signalling and fertility to the SCF ubiquitin-ligase complex in Arabidopsis. The Plant Journal : for Cell and Molecular Biology 32, 457-523.
Dieterle, M., Zhou, Y., Schäfer, E., Funk, M., and Kretsch, T. (2001). EID1, an F-box protein involved in phytochrome A-specific light signaling. Genes & development 15, 939-983.
Dixon D.P., and Edwards R. (2010). Glutathione transferases. The Arabidopsis Book 8, 1-15.
Dixon, D.P, and Edwards, R. (2009). Selective binding of glutathione conjugates of fatty acid derivatives by plant glutathione transferases. The Journal of Biological Chemistry 284, 21249-21305.
Dueckershoff, K., Mueller, S., Mueller, M., and Reinders, J. (2008). Impact of cyclopentenone-oxylipins on the proteome of Arabidopsis thaliana. Biochimica et biophysica acta 1784, 1975-2060.
Fairchild, C., Schumaker, M., and Quail, P. (2000). HFR1 encodes an atypical bHLH protein that acts in phytochrome A signal transduction. Genes & Development 14, 2377-2468.
Fankhauser, C., and Chory, J. (2000). RSF1, an Arabidopsis locus implicated in phytochrome A signaling. Plant Physiology 124, 39-84.
Farmer, E., and Ryan, C. (1992). Octadecanoid Precursors of Jasmonic Acid Activate the Synthesis of Wound-Inducible Proteinase Inhibitors. The Plant Cell 4, 129-263.
Glombitza, S., Dubuis, P.H., Thulke, O., Welzl, G., Bovet, L., Götz, M., Affenzeller, M., Geist, B., Hehn, A., Asnaghi, C., Ernst, D., Seidlitz, H., Gundlach, H., Mayer, K., Martinoia, E., Werck-Reichhart, D., Mauch, F., and Schäffner, A. (2004). Crosstalk and differential response to abiotic and biotic stressors reflected at the transcriptional level of effector genes from secondary metabolism. Plant Molecular Biology 54, 817-852.
Hause, B., Stenzel, I., Miersch, O., Maucher, H., Kramell, R., Ziegler, J., and Wasternack, C. (2000). Tissue-specific oxylipin signature of tomato flowers: Allene oxide cyclase is highly expressed in distinct flower organs and vascular bundles. Plant J. 24, 113–126.
Hirai, M., Klein, M., Fujikawa, Y., Yano, M., Goodenowe, D., Yamazaki, Y., Kanaya, S., Nakamura, Y., Kitayama, M., Suzuki, H., Sakurai, N., Shibata, D., Tokuhisa, J., Reichelt, M., Gershenzon, J., Papenbrock, J., and Saito, K. (2005). Elucidation of gene-to-gene and metabolite-to-gene networks in arabidopsis by integration of metabolomics and transcriptomics. The Journal of Biological Chemistry 280, 25590-25595.
Hoecker, U., Tepperman, J., and Quail, P. (1999). SPA1, a WD-repeat protein specific to phytochrome A signal transduction. Science (New York, N.Y.) 284, 496-505.
Holly, J.A., Patricia, C.B., and Mohammed, S. (2009). The global cysteine peptidase landscape in parasites. Trends in Parasitology 25.
Hsieh, H.L., Okamoto, H., Wang, M., Ang, L.H., Matsui, M., Goodman, H., and Deng, X.W. (2000). FIN219, an auxin-regulated gene, defines a link between phytochrome A and the downstream regulator COP1 in light control of Arabidopsis development. Genes & Development. 14:1958-1970.
Hudson, M., Ringli, C., Boylan, M., and Quail, P. (1999). The FAR1 locus encodes a novel nuclear protein specific to phytochrome A signaling. Genes & Development 13, 2017-2044.
Ishiguro, S. (2001). The DEFECTIVE IN ANTHER DEHISCENCE1 Gene Encodes a Novel Phospholipase A1 Catalyzing the Initial Step of Jasmonic Acid Biosynthesis, Which Synchronizes Pollen Maturation, Anther Dehiscence, and Flower Opening in Arabidopsis. The Plant Cell 13, 2191-2209.
Lariguet, P., and Dunand, C. (2005). Plant photoreceptors: phylogenetic overview. Journal of Molecular Evolution 61, 559-628.
Laudert, D., Schaller, F., and Weiler, E. (2000). Transgenic Nicotiana tabacum and Arabidopsis thaliana plants overexpressing allene oxide synthase. Planta 211, 163-168.
McConn, M., and Browse, J. (1996). The Critical Requirement for Linolenic Acid Is Pollen Development, Not Photosynthesis, in an Arabidopsis Mutant. The Plant Cell 8, 403-819.
Mueller, S., Hilbert, B., Dueckershoff, K., Roitsch, T., Krischke, M., Mueller, M., and Berger, S. (2008). General detoxification and stress responses are mediated by oxidized lipids through TGA transcription factors in Arabidopsis. The Plant Cell 20, 768-853.
Osterlund, M., Wei, N., and Deng, X. (2000). The roles of photoreceptor systems and the COP1-targeted destabilization of HY5 in light control of Arabidopsis seedling development. Plant Physiology 124, 1520-1524.
Pabst, M., and Jakoby, W. (1974). Glutathione S-transferases the first enzymatic step in mercapturic acid formation. Journal of biological Chemistry.
Reinbothe, C., Springer, A., Samol, I., and Reinbothe, S. (2009). Plant oxylipins: role of jasmonic acid during programmed cell death, defence and leaf senescence. The FEBS journal 276, 4666-4747.
Rizzini, L., Favory, J.-J., Cloix, C., Faggionato, D., O'Hara, A., Kaiserli, E., Baumeister, R., Schäfer, E., Nagy, F., Jenkins, G., and Ulm, R. (2011). Perception of UV-B by the Arabidopsis UVR8 protein. Science (New York, N.Y.) 332, 103-109.
Robson, F., Okamoto, H., Patrick, E., Harris, S.R., Wasternack, C., Brearley, C., and Turner, J. (2010). Jasmonate and phytochrome A signaling in Arabidopsis wound and shade responses are integrated through JAZ1 stability. The Plant Cell 22, 1143-1203.
Sanders, P., Lee, P., Biesgen, C., Boone, J., Beals, T., Weiler, E., and Goldberg, R. (2000). The arabidopsis DELAYED DEHISCENCE1 gene encodes an enzyme in the jasmonic acid synthesis pathway. The Plant Cell 12, 1041-1102.
Sang, D.Y., Young, H.C., and Jen, S. (2007). Arabidopsis mesophyll protoplasts: a versatile cell system for transient gene expression analysis. Nature Protocols 2, 1565-1572.
Sappl, P.G., Onate-Sanchez, L., Singh, K.B., and Millar, A.H. (2004). Proteomic analysis of glutathione S-transferases of Arabidopsis thaliana reveals differential salicylic acid-induced expression of the plant-specific phi and tau classes. Plant Molecular Biology 54, 205-424.
Sheard, L.B., Tan, X., Mao, H., Withers, J., Ben-Nissan, G., Hinds, T.R., Kobayashi, Y., Hsu, F.F., Sharon, M., Browse, J., He, S.Y., Rizo, J., Howe, G.A., and Zheng, N. (2010). Jasmonate perception by inositol-phosphate- potentiated COI1-JAZ co-receptor. Nature 468: 400-405.
Soh, M., Hong, S., Hanzawa, H., Furuya, M., and Nam, H. (1998). Genetic identification of FIN2, a far red light-specific signaling component of Arabidopsis thaliana. The Plant Journal : for Cell and Molecular Biology 16, 411-420.
Staswick, P.E. (2002). Jasmonate Response Locus JAR1 and Several Related Arabidopsis Genes Encode Enzymes of the Firefly Luciferase Superfamily That Show Activity on Jasmonic, Salicylic, and Indole-3-Acetic Acids in an Assay for Adenylation. The Plant Cell 14, 1405-1415.
Staswick, P., and Tiryaki, I. (2004). The oxylipin signal jasmonic acid is activated by an enzyme that conjugates it to isoleucine in Arabidopsis. The Plant Cell 16, 2117-2144.
Stelmach, B., Müller, A., Hennig, P., Gebhardt, S., Schubert-Zsilavecz, M., and Weiler, E. (2001). A novel class of oxylipins, sn1-O-(12-oxophytodienoyl)- sn2-O-(hexadecatrienoyl)-monogalactosyl Diglyceride, from Arabidopsis thaliana. The Journal of Biological Chemistry 276, 12832-12840.
Stintzi, A., and Browse, J. (2000). The Arabidopsis male-sterile mutant, opr3, lacks the 12-oxophytodienoic acid reductase required for jasmonate synthesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 97, 10625-10655.
Taki, N., Sasaki-Sekimoto, Y., Obayashi, T., Kikuta, A., Kobayashi, K., Ainai, T., Yagi, K., Sakurai, N., Suzuki, H., Masuda, T., Takamiya, K.-I., Shibata, D., Kobayashi, Y., and Ohta, H. (2005). 12-oxo-phytodienoic acid triggers expression of a distinct set of genes and plays a role in wound-induced gene expression in Arabidopsis. Plant Physiology 139, 1268-1351.
Thines, B., Katsir, L., Melotto, M., Niu, Y., Mandaokar, A., Liu, G., Nomura, K., He, S.Y., Howe, G.A., and Browse, J. (2007). JAZ repressor proteins are targets of the SCF(COI1) complex during jasmonate signalling. Nature 448: 661-665.
Turner, J., Ellis, C., and Devoto, A. (2002). The Jasmonate Signal Pathway. The Plant cell 14 Suppl, 64.
Wang, J.G., Chen, C.H., Chien, C.T., and Hsieh, H.L. (2011). FAR-RED INSENSITIVE219 modulates CONSTITUTIVE PHOTOMORPHOGENIC1 activity via physical interaction to regulate hypocotyl elongation in Arabidopsis. Plant Physiology. 156: 631-646.
Wasternack, C. (2007). Jasmonates: an update on biosynthesis, signal transduction and action in plant stress response, growth and development. Annals of Botany 100, 681-778.
Wu, C.Y., Peng, Y.Z., Wang, R.D., and Zhou, Y.X. (2012). Understanding the granulation process of activated sludge in a biological phosphorus removal sequencing batch reactor. Chemosphere 86, 767-840.
Xie, D. (1998). COI1: An Arabidopsis Gene Required for Jasmonate-Regulated Defense and Fertility. Science 280, 1091.
Zeidler, M., Bolle, C., and Chua, N. (2001). The phytochrome A specific signaling component PAT3 is a positive regulator of Arabidopsis photomorphogenesis. Plant & Cell Physiology 42, 1193-1393.
Zien, C., Wang, C., Wang, X., and Welti, R. (2001). In vivo substrates and the contribution of the common phospholipase D, PLDalpha, to wound-induced metabolism of lipids in Arabidopsis. Biochimica et biophysica acta 1530, 236-284.
dc.identifier.urihttp://tdr.lib.ntu.edu.tw/jspui/handle/123456789/65691-
dc.description.abstract先前研究顯示Far-red insensitive 219 (FIN219)在阿拉伯芥中扮演兩個角色,分別是遠紅光(FR)訊息傳遞下的正向調控者以及將茉莉酸(Jasmonic acid, JA)接上異亮胺酸(Isoleucine, Ile)以形成具生理活性的JA-Ile之酵素。FIN219-interacting protein 1(FIP1)是會和FIN219產生交互作用的蛋白質之一,研究指出,在活體外的情況下,FIP1可以促進FIN219生成JA-Ile的酵素活性。FIP1屬於穀胱甘肽轉移酶(Glutathione S-transferase tau class, GSTU)家族的一員,受質親和力分析的結果指出,GSTU普遍具有和茉莉酸生合成中間物結合的活性。此外,許多研究發現,當對阿拉伯芥施以JA或其前驅物處理時,可以偵測到一些GSTU的誘導表現,FIP1正是其中之一。我們以這些研究作為依據,想了解在植物體中FIP1是否參與在茉莉酸的訊息傳遞之中。同時,作為雙訊息傳遞路徑的共同調控者,FIN219是如何調控FIP1的表現,以及兩者的交互作用在FR或JA訊息傳遞下扮演的角色仍有待釐清。本研究中,我們使用了基因轉殖與雜交技術來探討上述的問題。根據實驗結果,我們發現FIP1的表現的確會被短時間或低濃度的JA處理所誘導,而在這樣的情況下,若將FIP1的mRNA量以外加的互補股抑制 (fip1as),植物的根部生長對JA的反應則會顯著降低,同時與JA相關的基因表現也會隨之降低。此外,在大量表現FIP1的轉殖株當中,會有對JA更為不敏感的外表型和受抑制的JA相關基因表現,這些結果顯示FIP1的存在對於JA的訊息傳遞有一定的重要性。我們還發現FIN219的表現也會受到FIP1的調控,而在FIP1FIN219和FIP1的雙突變株顯示了更明顯的JA訊息傳遞缺陷,表示FIP1和FIN219之間具有一定的關聯。透過與報導基因的結合,我們發現FIP1無論在細胞中或組織間,其分布位置都呈現專一性,這些特殊的表現位置不但與JA生合成和調控區域具有高度相關性,還會受到JA處理的影響,更加暗示了FIP1和茉莉酸訊息傳遞間的關聯性。zh_TW
dc.description.abstractPrevious studies showed that FIN219 is not only a positive regulator in far-red (FR) light signaling but a jasmonic acid (JA) conjugating enzyme. The conjugation of JA with isoleucine (Ile) by FIN219 leads to the bio-active JA-Ile that triggers the downstream JA signaling. FIN219-interacting protein 1 (FIP1) was found to interact with FIN219 under in vitro and in vivo conditions. Further investigation found that this interaction can enhance the enzyme activity of FIN219. Besides, FIP1 is a tau class member of the glutathione S-transferase (GSTU) superfamily in Arabidopsis. Previous research indicated that GSTU members are able to bind with oxylipins and some of them, including FIP1, could be induced by JA rapidly. Given that JA belongs to oxylins, the interaction of FIP1 and FIN219 may positively regulate JA signaling in Arabidopsis. In this study, we used transgenic plants that had changes of FIN219 and FIP1 expression levels; reporter gene fusion proteins were also harbored to verify the physical functions of FIP1 and FIN219. Here, we found that FIP1 was induced by JA rapidly as well as by low concentrations of JA persistently. Furthermore, the knocked-down of FIP1 under these conditions led to a negative effect on JA signaling. Surprisingly, the overexpression of FIP1 leads to various JA sensitivity effects by JA and its derivatives. The JA deficiencies caused by the fip1as/fin219-2 double mutant implies the coordinative functions of these two genes in JA signaling. Finally, the tissue-specific data showed that FIP1 and FIN219 were highly associated with the JA-related function areas. To sum up, these results provide an insight into the GSTU-modulated JA signal pathway.en
dc.description.provenanceMade available in DSpace on 2021-06-16T23:59:22Z (GMT). No. of bitstreams: 1
ntu-101-R98b42023-1.pdf: 4834617 bytes, checksum: d0f3b17093f6a809bcb16004c8156a5b (MD5)
Previous issue date: 2012
en
dc.description.tableofcontentsAbstract in Chinese ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• Ⅰ
Abstract in English ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• Ⅱ
Abbreviations •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• Ⅳ
Introduction •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 1
The Phytochrome A-mediated Far Red Light Signal Pathway •••••••••••••••••••••• 1
The Role of Far-red Insensitive 219 in FR Signaling •••••••••••••••••••••••••••••••• 2
The Jasmonate Signal Pathway •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 2
The Biosynthesis of Jasmonic Acid ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 3
The Perception of JA •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 4
The Glutathione S-transferases in Arabidopsis •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 5
The Glutathione Conjugates of Oxylipins Derivatives by Plant GSTU •••••••••••• 6
The Finding of FIN219-Interacting Protein 1 ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 7
Materials and Methods •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 9
Plant Materials ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 9
Plasmid Constructions and Transgenic Plants ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 9
Plant Growth Conditions •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 10
Total Genomic DNA Isolation for Genomic PCR ••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 11
RNA Extraction, Reverse Transcription, and Real-time RT-PCR •••••••••••••••••••• 11
GUS Staining Assay ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 12
Confocal Microscopy •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 12
Protoplast Preparation and PEG-Calcium Transfection ••••••••••••••••••••••••••••••• 12
Total Protein Isolation and Western Blotting ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 13
Measurement of Hypocotyl and Roots •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 13
Results ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 14
Examination of various FIP1 and FIN219 transgenic lines used in this study ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 14
The root growth of fip1as/fin219-2 double mutants was more insensitive to various concentrations of MeJA ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 14
Compared with JA, OPDA treatment caused a more significant suppression of root growth of fip1as mutants than Col-0 •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 15
The fip1 mutant showed varied sensitivities to MeJA and JA •••••••••••••••••••••••• 15
The fip1as/fin219-2 double mutant was partially sterile •••••••••••••••••••••••••••••• 16
Overexpression of FIP1 in fin219 mutant background reduced the root growth inhibition under MeJA treatment ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 16
FIP1 may participate in FR signaling with the exist of FIN219•••••••••••••••••••••• 18
FIP1 overexpression lines showed a more sensitive root growth response to low concentration of MeJA, and a less sensitive root response to low concentration of JA ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 18
FIP1 is positively regulated by JA signaling and alter the JA response when highly accumulate •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 19
FIP1 transcripts are accumulated after treatment with JA and OPDA and can alter the VSP1 expression ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 19
The pFIP1::FIP1-YFP transgenic plants showed a normal phenotype compared with their genetic backgrounds ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 20
Tissue-specific expression patterns of FIP1-YFP fusion proteins at the seedling stage •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 21
FIP1-YFP may be associated with chloroplasts in different patterns within the mesophyll cells ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 22
FIP1-YFP fusion proteins were highly expressed in both the stigma and the stamen ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 22
The expression patterns of FIP1-YFP in FIN219IP are similar to those in Col-0 ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 23
The distribution of FIP1-GUS within the plants is partially altered by FIN219 levels and JA treatment ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 23
The pFIN219::CFP-FIN219 functional cassette was able to complement the fin219-2 phenotype under JA and FR light conditions •••••••••••••••••••••••••••••••• 24
The tissue-specific expression patterns of CFP-FIN219 fusion proteins were partially overlapped with those of FIP1-YFPs ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 24
CFP-FIN219 was localized in both the cytosol and the nucleus within the cell ••• 25
Discussion •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 26
FIP1 is induced by JA within a short time and plays a role in JA signaling ••••••• 27
FIP1 is inhibited by extreme JA signaling and the over-expressing of it leads to negative effect on JA signaling ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 29
FIP1 coordinates with FIN219 to modulate JA signaling •••••••••••••••••••••••••••• 30
FIP1 may participate in FR signaling in the presence of FIN219 ••••••••••••••••••• 31
FIP1 may participate in JA transport •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 32
FIP1 may participate in JA production ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••32
FIP1 may modulate the differentiation of root and shoot under the regulation of Auxin •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 33
The expression patterns of FIN219 are partially merged with those of FIP1 •••••• 33
Proposed model of the connection between FIN219, FIP1, and JA signaling ••••• 34
Figures ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 36
References ••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 58
Appendix •••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••••• 63
dc.language.isoen
dc.title阿拉伯芥FIN219與FIP1交互作用在遠紅光與茉莉酸訊息傳遞途徑之功能zh_TW
dc.titleFunctional Studies of FIN219 and FIP1 Interaction on Far-Red Light and Jasmonic Acid Signaling in Arabidopsis thalianaen
dc.typeThesis
dc.date.schoolyear100-2
dc.description.degree碩士
dc.contributor.oralexamcommittee葉開溫,鄭秋萍,洪傳揚
dc.subject.keyword遠紅光,茉莉酸,穀胱甘&#32957,轉移&#37238,zh_TW
dc.subject.keywordFar-red insensitive 219,FIN219-interacting protein 1,Jasmonic acid,far-red light,Glutathione S-transferase tau class,en
dc.relation.page63
dc.rights.note有償授權
dc.date.accepted2012-07-17
dc.contributor.author-college生命科學院zh_TW
dc.contributor.author-dept植物科學研究所zh_TW
顯示於系所單位:植物科學研究所

文件中的檔案:
檔案 大小格式 
ntu-101-1.pdf
  目前未授權公開取用
4.72 MBAdobe PDF
顯示文件簡單紀錄


系統中的文件,除了特別指名其著作權條款之外,均受到著作權保護,並且保留所有的權利。

社群連結
聯絡資訊
10617臺北市大安區羅斯福路四段1號
No.1 Sec.4, Roosevelt Rd., Taipei, Taiwan, R.O.C. 106
Tel: (02)33662353
Email: ntuetds@ntu.edu.tw
意見箱
相關連結
館藏目錄
國內圖書館整合查詢 MetaCat
臺大學術典藏 NTU Scholars
臺大圖書館數位典藏館
本站聲明
© NTU Library All Rights Reserved