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http://tdr.lib.ntu.edu.tw/jspui/handle/123456789/62638Full metadata record
| ???org.dspace.app.webui.jsptag.ItemTag.dcfield??? | Value | Language |
|---|---|---|
| dc.contributor.advisor | 張大釗(Ta-Chau Chang) | |
| dc.contributor.author | Yu-Ting Chuang | en |
| dc.contributor.author | 莊翊廷 | zh_TW |
| dc.date.accessioned | 2021-06-16T16:06:13Z | - |
| dc.date.available | 2015-06-21 | |
| dc.date.copyright | 2013-06-21 | |
| dc.date.issued | 2013 | |
| dc.date.submitted | 2013-06-18 | |
| dc.identifier.citation | 第八章 參考文獻
(1) Peter M. J. Burgers. J of Biological Chemistry 2009, 284, 4041. (2) Harley, C. B.; Futcher, A. B.; Greider, C. W. Nature 1990, 345, 458. (3) Sadava, D. Life: The Science of Biology, 8th ed. (4) Smith, F.W.; Feigon, J. Nature 1992, 356, 164. (5) Blackburn, E. H.; Szostak, J. W. Annu. Rev. Biochem. 1984, 53, 163. (6) Roderick J. O'Sullivan. Nature Reviews Molecular Cell Biology 2010, 11, 171. (7) Greider, C. W.; Blackburn, E. H. Cell 1985, 43, 405. (8) Kim, N. W.; Piatyszek, M. A.; Prowse, K. R.; Harley, C. B.; West, M. D.; Ho, P. L. C.; Coviello, G. M.; Wright, W. E.; Weinrich, S. L.; Shay, J. W. Science 1994, 266, 2011. (9) Hiyama, E.; Hiyama, K.; Yokoyama, T.; Matsuura, Y.; Piatyszek, M. A.; Shay, J. W. Nat. Med. 1995, 1, 249. (10) Mergny, J.L.; Helene, C. Nat. Med. 1998, 4, 1366. (11) Moyzis, R. K.; Buckingham, J. M.; Cram, L. S.; Dani, M.; Deaven, L. L.; Jones, M. D.; Meyne, J.; Ratliff, R. L.; Wu, J. R. Proc, Natl. Acad. Sci. USA. 1988, 85, 6622. (12) Sen, D.; Gilbert, W. Methods Enzymol. 1992, 211, 191. (13) Gellert, M.; Lipsett, M. N.; Davies, D. R. Proc, Natl. Acad. Sci. USA. 1962, 48, 2013. (14) Williamson, J. R.; Raghuraman, M. K.; Cech, T. R. Cell 1989, 59, 871. (15) Burge, S.; Parkinson, G. N.; Hazel, P.; Todd, A. K.; Neidle, S. Nucleic Acids Res. 2006, 34, 5402. (16) Wang Y.; Patel D. J. Structure 1993, 1, 263. (17) Parkinson, G. N.; Lee, M. P. Neidle S. Nature 2002, 20, 876. (18) Collie, G. W.; Parkinson, G. N. Chem Soc. Rev., 2011, 40, 5867. (19) Bugaut, A.; Balasubramanian S. Nucleic Acids Res. 2012, 40, 4727. (20) Murchie, A.I. and Lilley, D.M. (1992) Nucleic Acids Res. 20, 49. (21) Cory, S.; Adams, J. M. Nature Reviews Cancer 2002, 2, 647. (22) Otake, Y.; Soundararajan, S.; Sengupta, T. K.; Kio, E. A.; Smith, J. C.; Pineda-Roman, M.; Stuart, R. K.; Spicer, E. K.; Fernandes, D. J. Blood 2007, 109, 3069. (23) Vaux, D. L.; Cory, S.; Adams J. M. Nature 1988, 335, 6189. (24) Li, A.; Ojogho, O.; Escher, A. Clin. Dev. Immunol. 2006, 13, 273. (25) Young, R. L.; Korsmeyer, S. J. Mol. Cell. Bio. 1993, 13, 3686. (26) Dexheimer, T. S.; Sun, D.; Hurley, L. H. J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 5404. (27) Dai, J.; Dexheimer, T. S.; Chen, D.; Carver, M.; Ambrus, A.; Jones, R. A.; Yang, D. J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 1096. (28) Monchaud, D.; Yang, P.; Lacroix, L.; Teulade-Fichou, M.; Mergny, J. Angew. Chem. 2009, 47, 4858. (29) Gray, D. M.; Wen, J. D.; Gray, C. W.; Repges, R.; Repges, C.; Raabe, G.; Fleischhauer, J. Chirality 2008, 20, 431. (30) Chang C. C.; Wu, J. Y.; Chang, T. C. J. Chin. Chem. Soc. 2003, 50, 185. (31) Huang, F. C.; Chang, C. C.; Lou, P. J.; Kuo, I. C.; Chien, C. W.; Chen, C. T.; Shieh, F. Y.; Chang, T. C.; Lin, J. J. Mol. Cancer Res. 2008, 6, 955. (32) Kang C.C.; Chang C. C.; Chang T. C.; Liao L. J.; Lou P. J.; Xie W. J.; Yeung E. S. Analyst 2007,132, 745. (33) Chang, C. C.; Kuo, I. C.; Ling, I. F.; Chen, C. T.; Chen, H. C.; Lou, P. J.; Lin, J. J.; Chang, T. C. Anal Chem. 2004, 76, 4490. (34) 曾鼎元，量測聚丙烯醯胺電泳中BMVC-2的螢光衰退期來研究G-四股結構的配體結合位置及結構分析，2008年7月. (35) Smith, F. W.; Feigon, J. Nature, 1992, 356, 164. (36) Tasi, Y. L.; Wang, Z. F.; Chen, W. W.; Chang, T. C. Nucleic Acids Res. 2011, 39, 17. (37) Lin, C. T.; Tseng, T. Y.; Wang, Z. F.; Chang, T. C. J. Phys. Chem. B 2011, 115, 2360. (38) Maskos, K. Acta Biochemica Polonica, 1978, 25, 2. (39) 朱任飛，人類端粒鳥嘌呤-四股結構去氧核醣酸序列: 整體與單分子的研究，2011年4月. (40) Miyoshi D.; Sugimoto N. Biochimie. 2008, 90, 1040. (41) Miyoshi D.; Karimata H, Sugimoto N. J. J. Am. Chem. Soc. 2006, 128, 7957. (42) Miyoshi D.; Matsumura S.; Nakano S.; J. Am. Chem. Soc. 2004, 126, 165. (43) Petraccone L.; Malafronte A.; Amato J.; Giancola C. J. Phys. Chem. B 2012, 116 2294. (44) Hansel, R.; Lohr, F.; Folfynova-Trantirkova S.; Bamberg, E.; Trantirek, L.; Dotsch, V. Nucleic Acids Res. 2011, 39, 5768. (45) Xue, Y.; Kan, Z. Y.; Wang, Q.; Yao, Y.; Liu, J.; Hao, Y. H.; Tan, Z. J. Am. Chem. Soc. 2007, 129, 11185. (46) Heddi, B.; Phan, A. T. J. Am. Chem. Soc. 2011, 133, 9824. (47) Rencluk, D.; Kejnovska, I.; Skolakova, P.; Bednarova, K.; Motlova, J.; Vorlickova, M. Nucleic Acids Res. 2009, 37, 6625. (48) Li, J.; Correia, J. J.; Wang, L.; Trent, J. O.; Chaires, J. B. Nucleic Acids Res. 2005, 33, 4649. (49) Chang C. C.; Chu J. F.; Kao F. J.; Chiu Y.C.; Lou P. J.; Chen H. C.; Chang T. C. Anal. Chem. 2006, 78, 2810. | |
| dc.identifier.uri | http://tdr.lib.ntu.edu.tw/jspui/handle/123456789/62638 | - |
| dc.description.abstract | 富含鳥糞嘌呤 (G-rich) 序列可以藉由四個鳥糞嘌呤的鹼基經由Hoogsteen氫鍵可以形成一環狀的平面G-四方結構 (G-quartet)，由於G-tract的數量與鹼基多寡為G-四股結構添增了結構多樣性，以Bcl2mid (d[5’-G3CGCG3AGAAG5CG3-3’]) 為例，少一個G-tract會影響G-四股結構的形成，若其中一個G-tract含有五個連續的G序列，則易形成多聚體。此外G-四股結構的檢測不能單靠CD圖，需要搭配其他的實驗結果加以驗證，凡經過驗證後的CD圖則進一步追蹤四股結構之變化。
過去實驗室以加熱超過Bcl2mid的解旋溫度的方式，觀察到G-四股結構由單體轉換到雙體的熱力學產物，因此我們想藉由銅離子誘導G-四股結構的展開與EDTA抑制銅離子作用達到重新摺疊的方法，在定溫下探討G-四股結構的轉換。且在稀釋溶液 (dilute solution) 、20% PEG和20% Ficoll的不同環境條件下進行檢測，進而比較Cu/EDTA與退火 (anneal) 所形成的主要G-四股結構差異。我們運用CD光譜、非變性聚丙烯醯胺電泳、乳液誘導過濾來簡化系統的複雜度和模擬分子擁擠環境等驗證方法，來分析短時間生理溫度的環境下摺疊所得到的產物，實驗結果顯示其結構是以動力學產物為主。不同於將退火過程所產生的熱力學產物，在37˚C下做檢測，更為貼近生理條件下的結構轉換，有利於設計小分子對於動力學產物的篩選，有助於穩定生理溫度下G-四股結構的方法，達到抑制癌細胞生長。 | zh_TW |
| dc.description.abstract | Four guanine bases are held together by Hoogsteen hydrogen bonds to form a square planar G-quartet. Two or more quartets may stack on top of each other to form a G-quadruplex. The presence of G-quadruplex plays a significant role in potentially leading to the shortening of chromosome ends in the cancer cells and regulating gene expression.
The number of G-tracts and the number of guanine bases in the G-tract gives a variety of structural morphology of G-quadruplex. For example, Bcl2mid (d[5’-G3CGCG3AGAAG5CG3-3’]). Missing a G-tract hinders the formation of G-quadruplex and preserving a G-tract with 5 consecutive guanine bases favors the formation of high order. Nevertheless, the most common apparatus for G-quadruplex examination, CD spectrum has been challenged for its reliability. Our experiment results show the inadequacy in G-quadruplex inspection for CD spectrum only while missing a G-tract; however, CD spectrum may apply on monitoring structural conversion of G-quadruplex once it has been confirmed on NMR spectrum. Previously our lab observed the structural conversion of Bcl2mid from a monomer to a thermodynamic product, dimer, upon heating above melting temperature; however, we would like to mimic the human body temperature and molecular crowding environment to study the possible structural conversion for Bcl2mid. We applied copper ion to induce the unfolding on G-quadruplex and EDTA2- chelates the copper ion to make random coil refolding back to G-quadruplex at a constant temperature. We have utilized CD, gel electrophoresis, emulsion induced filtration to study possible structural conversion. As a result, the kinetic product of G-quadruplex, monomer, in physiological temperature dominates in a short period of G-quadruplex refolding time. This finding may lead to a further studies on screening small molecules for the dominated G-quadruplex structure in the cells for the potential candidate of anti-cancer drugs. | en |
| dc.description.provenance | Made available in DSpace on 2021-06-16T16:06:13Z (GMT). No. of bitstreams: 1 ntu-102-R99223210-1.pdf: 1822218 bytes, checksum: 7d60bee1e7a60ee5082a58a005c916e5 (MD5) Previous issue date: 2013 | en |
| dc.description.tableofcontents | 目錄
口試委員會審定書…………………………………………………………………….i 致謝……………………………………………………………………. …………......ii 圖目錄…………………………………………………………………………...….....v 表目錄………………………………………………………………………………...vi 中文摘要………………………………………………………………………….….vii 英文摘要………………………………………………………………………….. ..viii 第一章 緒論 1.1 DNA複製過程……………………………………………………….……1 1.2 端粒與端粒酶………………………………….…..........................………1 1.3 G-四股結構………………………………………………..………….……2 1.4 Bcl-2……………………………..……………….………………………4 1.5 研究動機.……………………………………..……………………...…….7 第二章 實驗材料與方法 2.1 非變性聚丙烯醯胺電泳 (Polyacrylamide gel electrophoresis, PAGE) ………………………………...……………..…………………….8 2.2 圓二色光譜 (circular dichroism, CD)………………….....….....................8 2.3 退火 (Anneal)……..………………..………………….…..........................9 2.4 測量DNA濃度…………………………………….….….........................10 2.5 BMVC與BMVC-2介紹………………………………............................10 2.6 單光子激發螢光生命期影像顯微技術 (Fluorescence Lifetime Image Microscopy, FLIM) ……………………...………....................................11 2.7 核磁共振光譜學 (Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy , NMR).…………………………………………....……..…......................13 2.8 乳液引導過濾 (Emulsion induced filtration)..………..............................13 第三章 Bcl2mid與變異序列 3.1 G-四股結構與變異序列的設計…………………….…......................…..14 3.2 Bcl2mid與變異序列的CD光譜……............................…………………14 3.3 Bcl2mid與變異序列的非變性聚丙烯醯胺電泳...............………………15 3.4 Bcl2mid與變異序列的NMR光譜…................................………………15 第四章 生理溫度下探討G-四股結構的摺疊與展開 4.1 可逆控制G-四股結構展開-摺疊機制……................…………………...23 4.2 Bcl2mid在生理條件下的主要G-四股結構…………..............................23 4.3 利用定溫的方式來探討 H22和Bcl2mid可逆控制G-四股展開與摺疊後的平衡差異................................................................................................24 4.4 以非變性聚丙烯醯胺電泳呈現Bcl2mid 退火時形成的多聚體在生理件 下解開與重新摺疊的變化…………………..…………………………..26 4.5 用乳液引導過濾純化Bcl2mid系統，並探討在不同溫度的調控下，利用可逆展開-摺疊控制反應控制其動力學產物與熱力學產物分佈的情況………………………….……….…………………………………....29 第五章 模擬細胞中的擁擠，在生理溫度下探討G-四股結構的摺疊與展開 5.1 用分子擁擠試劑(molecular crowding reagent)模擬細胞中的擁擠環境.31 5.2 用20% Ficoll 400做為分子擁擠試劑模擬細胞中的擁擠環境....……..31 5.3 用20% PEG 200做為分子擁擠試劑模擬細胞中的擁擠環境………..32 第六章 討論………………………………………………………………..………34 第七章 結論………………………………………………………………………..38 第八章 參考文獻…………………………………………………………………..40 圖目錄 圖 1-1 (A)DNA複製與引子移除。 (B) 端粒酶的作用。 (C) 螢光原位雜合法 (Fluorescent in situ hybridization) 。...........................................…………...2 圖 1-2 (A) G-四方結構 (G-quartet)。(B) d[5’-AG3(T2AG3)3-3’] (H22) 在鉀離子中X光晶體繞射所得的平行螺旋槳結構。(C) H22在鈉離子溶液中以NMR光譜分析得到反平行籃子型的G-四股結構。..................…………..3 圖 1-3 (A) 在基因組中可能形成G-四股結構的DNA區段與RNA區段。(B) 富含鳥糞嘌呤的啟動子區段也可以形成G-四股結構。 ...............................4 圖 1-4 (A) Bcl2 5’不轉譯區段中富含鳥糞嘌呤的39個核甘酸 d[5’-AG4CG3CGCG3AGGAAG5CG3AGCG4CTG-3’]和可形成穩定G-四股結構的序列。 (B) 上圖為Bcl2mid NMR圖譜，下圖為Bcl2M NMR圖譜。 (C) Bcl2M結構示意圖。....................................................................6 圖 2-1 (A) 3,6-bis (1-methyl-4-vinylpyridinium) carbazole diiodide (BMVC) 結構。(B) 3,6-bis (1-methyl-2-vinylpyridinium) carbazole diiodide (BMVC-2) 結構。................................................................................................................11 圖 2-2 (A) Bcl2mid在室溫加入150 mM K+進行可逆展開摺疊後所測得的膠體螢光生命期，藉由兩個指數進行配件。 (B) Bcl2-M2 150 mM K+所測得的膠體螢光生命期，藉由一個指數進行配件。......................................12 圖 3-1 Bcl2mid、Bcl2M、Bcl2-M1、Bcl2-M2和Bcl2-M-M1分別在150 mM K+與5 mM K+的環境37°C 測得的CD光譜圖。.....................................17 圖 3-2 Bcl2mid、Bcl2M、Bcl2-M1、Bcl2-M2和Bcl2-M-M1在150 mM K+與5 mM K+的環境跑膠圖，分別以(A)紫外光顯影。 (B) BMVC-2後染螢光照相圖。………………………............................................................................19 圖 3-3 Bcl2mid變異序列NMR光譜圖。................................................................21 圖 4-1 Cu2+與鳥糞嘌呤的第七號氮作用，破壞由Hoogsteen氫鍵所形成的一環 狀的G-四方平面。.......................................................................................24 圖 4-2 定溫下 ( 37°C) 利用Cu2+和EDTA2-控制Bcl2mid的解開和摺疊。…....24 圖 4-3 Bcl2mid與H22在37°C的環境下分別解開再重新摺疊。.......................26 圖 4-4 Bcl2mid與Bcl2-M1在37°C的環境下分別解開再重新摺疊...................28 圖 4-5 (A) Bcl2mid在室溫加入150 mM K+ (B) Bcl2mid 150 mM K+退火，利用 EIF將多聚體過濾掉之後再進行Cu/EDTA實驗光譜圖。(C) BMVC-2螢 光照相圖。....................................................................................................30 圖 5-1 (A) Bcl2mid在室溫加入150 mM K+ 20% Ficoll cacodylate，進行Cu/EDTA實驗所得的紫外光顯影圖 (B) BMVC-2後染的螢光照相圖。…………………………………………………………………………33 圖 5-2 (A) Bcl2mid在室溫加入150 mM K+ 20% PEG cacodylate，進行Cu/EDTA實驗所得的紫外光顯影圖 (B) BMVC-2後染的螢光照相圖。................33 表目錄 表2-1本實驗所使用的溶劑表......................................................................................9 表2-2 DNA序列..........................................................................................................10 表3-1 Bcl2mid、Bcl2-M、Bcl2-M1、Bcl2-M2和Bcl2-M-M1在25°C 150 mM K+和5 mM K+的環境測得的CD光譜圖，統整是否有265 nm、280 nm和295 nm的特徵吸收。..............................................................................................18 表3-2由圖3-2 (B) 的BMVC-2後染膠測得Bcl2mid、Bcl2M、 Bcl2-M1、 Bcl2-M2和Bcl2-M-M1的膠體螢光生命週期 (n=3統計結果)。................20 表3-3 CD光譜、NMR光譜、非變性聚丙烯醯胺電泳和 BMVC-2膠體螢光生命 期150 mM K+與5mM K+的環境探討變異序列 (Bcl2-M1、Bcl2-M2和 Bcl2-M-M1) 的單體和多聚體。.....................................................................22 表4-1膠體螢光生命期是由圖4-4 (B) 所呈現的 BMVC-2後染膠上的A、B、C和D band所測得的H22打開和摺疊後的螢光生命期。...............................26 表4-2 膠體螢光生命期由圖4-5 (B) BMVC-2後染膠上標示的band所測得的 Bcl2mid展開和摺疊後的螢光生命期。..........................................................28 | |
| dc.language.iso | zh-TW | |
| dc.subject | G-四股結構 | zh_TW |
| dc.subject | G-quadruplex | en |
| dc.title | 定溫的方式探討Bcl2mid可逆控制G-四股展開與摺疊後的平衡差異 | zh_TW |
| dc.title | Reversibly Manipulate Unfolding and Refolding of G-quadruplex at Set Temperature for Bcl2mid | en |
| dc.type | Thesis | |
| dc.date.schoolyear | 101-2 | |
| dc.description.degree | 碩士 | |
| dc.contributor.oralexamcommittee | 李弘文(Hung-Wen Li),徐尚德(Shang-Te Hsu) | |
| dc.subject.keyword | G-四股結構, | zh_TW |
| dc.subject.keyword | G-quadruplex, | en |
| dc.relation.page | 42 | |
| dc.rights.note | 有償授權 | |
| dc.date.accepted | 2013-06-18 | |
| dc.contributor.author-college | 理學院 | zh_TW |
| dc.contributor.author-dept | 化學研究所 | zh_TW |
| Appears in Collections: | 化學系 | |
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|---|---|---|---|
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