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DC 欄位 | 值 | 語言 |
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dc.contributor.advisor | 許輔 | |
dc.contributor.author | Xhao-Kai Kuo | en |
dc.contributor.author | 郭肇凱 | zh_TW |
dc.date.accessioned | 2021-06-13T16:28:58Z | - |
dc.date.available | 2007-07-22 | |
dc.date.copyright | 2005-07-22 | |
dc.date.issued | 2005 | |
dc.date.submitted | 2005-07-13 | |
dc.identifier.citation | 中國生草藥研究中心. 1981a. 彩色生草藥圖譜. 啟業書局. 第二輯 p.270- 271.
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dc.identifier.uri | http://tdr.lib.ntu.edu.tw/jspui/handle/123456789/38260 | - |
dc.description.abstract | 本研究探討山防風(Echinops grijsii)、山葡萄(Ampelopsis brevipedunculata Maxim)、白鶴靈芝(Rhinacanthus nasutus L. Kurz)、荔枝草(Salvia plebeia R. Brown)、雞血藤(Millettia reticulata)、砂仁(Amomi fructus)與紅棗(Zizyphus jujube Mill) 等七種中草藥之水萃冷凍乾燥粉末的免疫調節活性。
體外免疫調節活性試驗發現,山防風與荔枝草樣本於濃度400 µg/mL以下時,能夠直接活化巨噬細胞株RAW 264.7產生一氧化氮(nitric oxide,NO) 與腫瘤壞死因子(TNF-α),並具有劑量效應;而山防風、山葡萄、砂仁與荔枝草等四種中草藥樣本均能顯著(P<0.05)提高處理後的小鼠脾細胞之IFN-r分泌量,其中以山防風與荔枝草的效果最佳;至於雞血藤、荔枝草與紅棗可以提高脾細胞對MTT的代謝,而山防風、白鶴靈芝草與紅棗在細胞核酸複製利用BrdU之分析中具有提高小鼠脾細胞增生的活性。 體內非特異性免疫調節活性試驗發現,餵食中草藥荔枝草之小鼠,相較於對照組可以顯著(P<0.05)活化腹腔巨噬細胞與脾貼附細胞產生NO與TNF-α;而餵食中草藥砂仁、山葡萄與紅棗之小鼠,相較於對照組產生之NO與TNF-α則相對降低。其他餵食荔枝草、砂仁與白鶴靈芝草之小鼠,血清中之IFN-r相較於對照組有顯著(P<0.05)之提高;而餵食山葡萄、雞血藤與砂仁之小鼠,其血清中之IL-4相較於餵食對照組則有顯著(P<0.05)之提高;餵食山防風、白鶴靈芝草、荔枝草與砂仁等中草藥之單核球百分吞噬率可以顯著(P<0.05)高於對照組之結果。 體內OVA特異性免疫調節活性試驗發現,餵食荔枝草與紅棗之小鼠脾細胞,相較於對照組可以顯著(P<0.05)產生OVA特異性之IFN-r;而餵食山防風、荔枝草與雞血藤之小鼠脾細胞,相較於對照組則會顯著(P<0.05)增加OVA特異性之脾細胞增生率。此外,餵食中草藥山防風與山葡萄之小鼠血清,相較於對照組則會產生顯著(P<0.05) OVA特異性之IgG,有助於體液防禦對抗侵害性之特異抗原。 由體外與體內試驗結果,發現中草藥之水萃物中具有免疫調節功能之物質,然而其有效成份與機制尚不清楚,但深具醫藥治療之研究潛力。 | zh_TW |
dc.description.abstract | The objective of this study was to evaluate the immunomodulatory effects of the powders freeze-dried from water extract of seven Chinese medicinal plants, including Ampelopsis brevipedunculata (Maxim), Amomi fructus, Echinops grijsii, Millettia reticulata, Rhinacanthus nasutus L. Kurz, Salvia plebeia R. Brown, and Zizyphus jujube Mill.
In vitro immunomodulatory experiments showed that E. grijsii and S. plebeian R. Brown (0-400 µg/mL) stimulated RAW 264.7 macrophages to produce NO and secrete TNF-α in a dose-dependent manner. E. grijsii, A. brevipedunculata (Maxim), A. fructus, and S. plebeia R. Brown significantly (P<0.05) promoted the IFN-r secretion of mouse splenocytes. Moreover, M. reticulata, S. plebeia R. Brown, and Z. jujube Mill improved the MTT metabolization of mouse splenocytes, and E. grijsii, R. nasutus L. Kurz and Z. jujube Mill promoted cell proliferation of mouse splenocytes detected by BrdU uptake analysis. The non-specific immunomodulatory experiments showed that administration of S. plebeia R. Brown significantly (P<0.05) stimulated mouse peritoneal macrophages and adherent splenocytes to produce NO and secrete TNF-α. Administration of A. fructus, A. brevipedunculata (Maxim), and Z. jujube Mill significantly (P<0.05) decreased the NO production and TNF-α secretion by mouse peritoneal macrophages and adherent splenocytes. Administration of S. plebeia R. Brown, A. fructus, and R. nasutus L. Kurz significantly (P<0.05) increased the IFN-r secretion in serum. Administration of A. brevipedunculata (Maxim), M. reticulata, and A. fructus significantly (P<0.05) increased the IL-4 secretion in serum. Administration of E. grijsii, R. nasutus L. Kurz, S. plebeia R. Brown and A. fructus significantly (P<0.05) enhanced the phagocytosis percentage of monocytes. The OVA-specific experiment showed that the administration of S. plebeia R. Brown and Z. jujube Mill significantly (P<0.05) increased OVA-specific IFN-r secretion by mouse splenocytes. Administration of E. grijsii, S. plebeia R. Brown, and M. reticulate significantly (P<0.05) enhanced the OVA-specific cell proliferation of mouse splenocytes. Moreover, administration of E. grijsii and A. brevipedunculata (Maxim) significantly (P<0.05) enhanced OVA-specific IgG production. The results of in-vitro and in-vivo experiments showed that the water extract of these seven Chinese medicinal plants had immunomodulatory functions. Although the active components and mechanisms have not been confirmed, these Chinese medicinal plants might still have potentials in related medicinal applications. | en |
dc.description.provenance | Made available in DSpace on 2021-06-13T16:28:58Z (GMT). No. of bitstreams: 1 ntu-94-R92628210-1.pdf: 1401518 bytes, checksum: 5387192efbbbcb4c42c0c06388ca2087 (MD5) Previous issue date: 2005 | en |
dc.description.tableofcontents | 目錄 i
圖表目錄 vi 縮寫表 0 中文摘要 1 英文摘要 3 第一章 前言 5 第二章 研究背景與動機 7 第一節 研究中草藥的重要性 7 第二節 數種中草藥之相關 12 一、山防風 12 二、山葡萄 14 三、白鶴靈芝草 17 四、荔枝草 20 五、雞血藤 22 六、砂仁 25 七、紅棗 27 第三節 免疫細胞與細胞激素 33 第四節 研究動機與目的 36 第三章 材料與方法 38 第一節 中草藥之萃取製備 38 一、材料 38 二、萃取製備 38 第二節 中草藥之蛋白純化 39 一、材料 39 二、蛋白純化 40 三、蛋白質濃度測定 42 第三節 生化特性之分析 44 一、材料 44 二、胺基酸組成分析 45 三、血球凝集活性試驗 45 第四節 體外免疫調節活性試驗 46 一、材料 46 二、對巨噬細胞株RAW 264.7之影響 47 (一)、巨噬細胞株RAW 264.7產生一氧化氮 47 (二)、巨噬細胞株RAW 264.7產生細胞激素TNF-α 49 三、對小鼠脾細胞之影響 51 (一)、脾細胞的分離與製備 51 (二)、細胞激素IFN-r之測定 51 (三)、脾細胞代謝活性試驗(MTT) 53 (四)、脾細胞增生試驗(BrdU) 54 (五)、細胞毒性測定(LDH) 55 第五節 體內非特異性免疫調節活性試驗 57 一、材料 57 二、餵食中草藥材料之試驗設計 58 三、對腹腔巨噬細胞與脾貼附細胞之影響 59 (一)、腹腔巨噬細胞與脾貼附細胞之分離與製備 59 (二)、腹腔巨噬細胞與脾貼附細胞產生一氧化氮 60 (三)、腹腔巨噬細胞與脾貼附細胞產生細胞激素TNF-α 61 四、血液中單核球之吞噬試驗 62 五、對小鼠血清中細胞激素含量之影響 64 (一)、小鼠血清之取得 64 (二)、血清中細胞激素IFN-r之測定 64 (三)、血清中細胞激素IL-1之測定 66 (四)、血清中細胞激素IL-4之測定 67 (五)、血清中細胞激素IL-6之測定68 第六節 體內特異性免疫調節活性試驗 70 一、材料 70 二、餵食中草藥材料之試驗設計 71 三、對小鼠脾細胞之影響 72 (一)、脾細胞的分離與製備 72 (二)、OVA特異性細胞激素IFN-r之測定 72 (三)、OVA特異性脾細胞代謝活性試驗(MTT) 74 (四)、OVA特異性脾細胞增生試驗(BrdU)74 四、對小鼠血清中OVA特異性IgG之影響 75 (一)、小鼠血清之取得 75 (二)、血清中OVA特異性之IgG測定 75 第七節 統計分析 77 第四章 結果與討論 78 第一節 中草藥之萃取製備 78 一、萃取製備 78 第二節 中草藥之蛋白與生化分析 78 一、蛋白純化 78 二、蛋白質濃度測定 79 三、胺基酸組成分析 80 四、血球凝集活性分析 80 第三節 體外免疫調節活性試驗 81 一、對巨噬細胞株RAW 264.7之影響 81 (一)、巨噬細胞株RAW 264.7產生一氧化氮 81 (二)、巨噬細胞株RAW 264.7產生細胞激素TNF-α 82 二、對小鼠脾細胞之影響 83 (一)、細胞激素IFN-r之測定 83 (二)、脾細胞代謝活性試驗(MTT) 84 (三)、脾細胞增生試驗(BrdU) 84 (四)、細胞毒性測定(LDH) 85 第四節 體內非特異性免疫調節活性試驗86 一、餵食中草藥材料之試驗設計 86 二、對腹腔巨噬細胞與脾貼附細胞之影響 86 (一)、活化腹腔巨噬細胞 86 (二)、活化脾貼附細胞 88 三、血液中單核球之吞噬試驗 88 四、對小鼠血清中細胞激素含量之影響 89 (一)、血清中細胞激素IFN-r之測定 89 (二)、血清中細胞激素IL-1之測定 89 (三)、血清中細胞激素IL-4之測定 90 (四)、血清中細胞激素IL-6之測定 90 第五節 體內特異性免疫調節活性試驗 90 一、餵食中草藥材料之試驗設計 90 二、對小鼠脾細胞之影響 91 (一)、OVA特異性細胞激素IFN-r之測定 91 (二)、OVA特異性脾細胞代謝活性試驗(MTT) 92 (三)、OVA特異性脾細胞增生試驗(BrdU) 92 三、對小鼠血清中OVA特異性IgG之影響 93 第五章 討論 94 第六章 結論 99 參考文獻 100 表一、七種中草藥之可溶性蛋白含量 108 表二、七種中草藥之胺基酸組成 109 圖一、中草藥之萃取製備流程 110 圖二、七種中草藥之冷凍乾燥粉末 111 圖三、七種中草藥凝集小鼠紅血球之活性分析 112 圖四、不同中草藥對RAW 264.7巨噬細胞產生NO之影響 113 圖五、不同中草藥對受LPS活化RAW 264.7巨噬細胞產生NO之影響 114 圖六、不同中草藥對RAW 264.7巨噬細胞產生TNF-α之影響 115 圖七、不同中草藥對受LPS活化RAW 264.7巨噬細胞產生TNF-α之影響響 116 圖八、七種中草藥對小鼠脾細胞產生INF-之影響 117 圖九、山防風(EG)與荔枝草(SP)對小鼠脾細胞產生INF-r之影響 118 圖十、不同中草藥對小鼠脾臟細胞代謝MTT之影響 119 圖十一、不同中草藥對小鼠脾臟細胞增生之影響 120 圖十二、以LDH assay測定不同中草藥對小鼠脾細胞之細胞毒性 121 圖十三、非特異性免疫調節餵食設計流程圖 122 圖十四、餵食不同中草藥對小鼠腹腔巨噬細胞產生NO之影響 123 圖十五、餵食不同中草藥對小鼠腹腔巨噬細胞產生TNF-α之影響 124 圖十六、餵食不同中草藥對小鼠脾貼附細胞產生NO之影響 125 圖十七、餵食不同中草藥對小鼠脾貼附細胞產生TNF-α之影響 126 圖十八、餵食不同中草藥對小鼠血液中單核球吞噬作用之影響 127 圖十九、血清中細胞激素INF-r之測定 128 圖二十、血清中細胞激素IL-4之測定 129 圖二十一、特異性免疫調節餵食設計流程圖 130 圖二十二、餵食不同中草藥對經過OVA免疫之小鼠脾臟細胞產生OVA特異性IFN-r之影響 131 圖二十三、餵食不同中草藥對經過OVA免疫之小鼠脾臟細胞產生OVA特異性IFN-r百分比 132 圖二十四、餵食不同中草藥對經過OVA免疫之小鼠脾臟細胞產生OVA特異性細胞代謝MTT活性之影響 133 圖二十五、餵食不同中草藥對經過OVA免疫之小鼠脾臟細胞產生OVA特異性細胞增生活性百分比 134 圖二十六、餵食不同中草藥對經過OVA免疫之小鼠脾臟細胞產生 OVA特異性細胞增生(BrdU)百分比 135 圖二十七、餵食不同中草藥對小鼠血清中OVA特異性IgG含量之影響136 附錄一、動物與人體的每公斤體重劑量折算係數表 137 附錄二、各中草藥水萃物之萃取率 138 | |
dc.language.iso | zh-TW | |
dc.title | 七種中草藥免疫調節功能之研究 | zh_TW |
dc.title | Studies on the Immunomodulatory Properties of Seven Chinese Medicinal Plants | en |
dc.type | Thesis | |
dc.date.schoolyear | 93-2 | |
dc.description.degree | 碩士 | |
dc.contributor.oralexamcommittee | 顏國欽,林金源,周志輝 | |
dc.subject.keyword | 中草藥,免疫調節功能,山防風,山葡萄,白鶴靈芝草,荔枝草,雞血藤,砂仁,紅棗, | zh_TW |
dc.subject.keyword | Chinese medicinal plants,immunomodulatory function,Ampelopsis brevipedunculata (Maxim),Amomi fructus,Echinops grijsii,Millettia reticulata,Rhinacanthus nasutus L. Kurz,Salvia plebeia R. Brown,Zizyphus jujube Mill, | en |
dc.relation.page | 138 | |
dc.rights.note | 有償授權 | |
dc.date.accepted | 2005-07-13 | |
dc.contributor.author-college | 生物資源暨農學院 | zh_TW |
dc.contributor.author-dept | 園藝學研究所 | zh_TW |
顯示於系所單位: | 園藝暨景觀學系 |
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